主要功能
Ø ULM-500具备多功能数据采集功能，可以连接多种PAR辐射传感器和温度、湿度传感器。
Ø ULM-500带两个BNC接口，可以与各种型号的带BNC接口的PAR传感器连接使用。
Ø 通道1具有高时间分辨率，在1.2s内可以采集120个时间点，并显示最大值，最小值与平均值。
Ø 通过Wincontrol-3软件可以对光斑光进行连续快速检测。
Ø 5档自动切换光强敏感区间，使得可以测定高达99999的光强，也可以测定微弱到-0.1的光强。可以使用自动测定，也可以手动测定极短时间的光强变化。
Ø 另有一个接口可以连接JUNIOR-B叶夹进行连续监测。
Ø 可以用来进行光强的简单测定，也可以作为连续测定的数据采集器。可以在单机模式下长时间（2个月或100天）连续记录环境PAR变化情况，并可显示数据变化图。如果通过USB与电脑连接后，则记录时间没有限制。
应用领域
实时测定或连续监测环境PAR或水中PAR，进行生态学、环境研究学研究。
主要技术参数
Ø 设计：浅灰色塑料外壳，带按键和背光LCD显示屏，带两个BNCJ接口以及连接温度和湿度传感器的接口
Ø 尺寸：12×7.5×3.5 cm；
Ø 重量：210g（含4节AAA电池）
Ø 供电：4节AAA电池，或者USB供电
Ø 工作环境：35-85%RH（不结露）
Ø 时间分辨率：PAR#1:100次/秒，PAR#2与其它通道：5次/秒
Ø 监测时间：单机模式下，2个月天或100天；连接电脑时，WinControl-3软件控制，无时间限制
Ø 存储：可存储50000行数据
Ø 接口：2个BNC接口（可设置从-50.0到-9999.间的校准系数），1个连接Junior-B接口，1个USB接口
Ø 显示：5种高亮显示模式（1：全显示数据；2-4：大写字母显示两个传感器；5：可显示包括最大值，最小值和平均值的通道1图形），分辨率：0.1µmol m-2s-1
US-SQS系列PAR传感器技术参数
l 设计：直径3.7 mm的集电器与直径2 mm的光纤连接
l 信号检测：高稳定性硅光伏检测器（蓝色增强），经滤光后专门检测380-710 nm波段
l 响应时间：25 ns
l 温度系数：0.18%/K
l 角响应：从垂直轴到100°的误差< 5%
l 方位角：从垂直轴到360°的误差< 5%
l 供电：不需
l 工作温度：-5℃ ~ 45℃
l 耐受水压：2.8 m
选购指南
ULM-500可与各种带BNC接口的PAR传感器连接使用，不仅仅限于下表列出的传感器。此外，ULM-500也可与WALZ公司的2030-B叶夹联用，方便的测量环境光强和（叶片）温度。
图片 | 介绍 | 备注 |
| MQS-B 包括Cosine（平面状）传感器、3 m长数据线和BNC接口。 | 适合实时或长期的环境光强测量。左图中连接了两个MQS-B传感器。 |
| 2030-B 包括Cosine（平面状）传感器、热电偶、叶夹、数据线和叶夹。 | 在空气中测量光强和温度。 |
| 2060-M 包括Cosine（平面状）传感器、热电偶、叶夹、数据线。 | 在空气中测量光强和温度。 |
| US-SQS/L 包括Scalar传感器（球状）、3 m长数据线和BNC接口，可以直接与ULM-500连接，测量环境光强。 | 可在空气中和水中测量。 |
| US-SQS/IB 包括Scalar传感器（球状）、3 m长数据线和BNC接口，并带一个特制盖子，适合与PAM-100或XE-PAM联用。 它可以直接与ULM-500连接，测量水中（各种溶液皆可）PAR。 | 可作为PAM-100或XE-PAM的配件 |
| US-SQS/WB 包括Scalar传感器（球状）、3 m长数据线和BNC接口，并带一个特制盖子和放大器（适合弱光下测量），适合与多种PAM联用。 它可以直接与ULM-500连接，测量水中（各种溶液皆可）PAR。 | 常作为PAM-100、XE-PAM、DUAL-PAM-100、WATER-PAM的配件，也可与PAM-2100/2500、MINI-PAM联用。 |
| US-SQS/B 包括Scalar传感器（球状）、3 m长数据线和BNC接口，并带一个特制盖子和放大器（适合弱光下测量，带电池），适合与PHYTO-PAM联用。 它可以直接与ULM-500连接，测量水中（各种溶液皆可）PAR。 | 常作为PHYTO-PAM的配件。 |
参考文献
数据来源：光合作用文献Endnote数据库，更新至2016年9月，文献数量超过6000篇
原始数据来源：Google Scholar
1. Baer, S., et al. (2016). "Optimization of spectral light quality for growth and product formation in different microalgae using a continuous photobioreactor." Algal Research 14: 109-115.
2. Cartaxana, P., et al. (2016). "Light and O2 microenvironments in two contrasting diatom-dominated coastal sediments." MARINE ECOLOGY PROGRESS SERIES 545: 35-47.
3. Elgetti Brodersen, K., et al. (2016). "Nanoparticle-based measurements of pH and O2 dynamics in the rhizosphere of Zostera marina L.: effects of temperature elevation and light-dark transitions." Plant, Cell & Environment 39(7): 1619-1630.
4. Fuentes-Grünewald, C., et al. (2016). "Long-term dinoflagellate culture performance in a commercial photobioreactor: Amphidinium carterae case." Bioresource Technology 218: 533-540.
5. Goessling, J. W., et al. (2016). "Photo-Protection in the Centric Diatom Coscinodiscus granii is Not Controlled by Chloroplast High-Light Avoidance Movement." Frontiers in Marine Science 2(115).
6. Jeffryes, C., et al. (2016). "Energy conversion in an internally illuminated annular-plate airlift photobioreactor." Engineering in Life Sciences 16(4): 348-354.
7. Koren, K., et al. (2016). "Development of a rechargeable optical hydrogen peroxide sensor - sensor design and biological application." Analyst 141(14): 4332-4339.
8. Kottmeier, D. M., et al. (2016). "Acidification, not carbonation, is the major regulator of carbon fluxes in the coccolithophore Emiliania huxleyi." New Phytologist 211(1): 126-137.
9. Kottmeier, D. M., et al. (2016). "H+-driven increase in CO2 uptake and decrease in HCO3− uptake explain coccolithophores' acclimation responses to ocean acidification." Limnology and Oceanography: n/a-n/a.
10. Li, J., et al. (2016). "In situ study on photosynthetic characteristics of phytoplankton in the Yellow Sea and East China Sea in summer 2013." Journal of Marine Systems 160: 94-106.
11. Lichtenberg, M., et al. (2016). "Photosynthetic Acclimation of Symbiodinium in hospite Depends on Vertical Position in the Tissue of the Scleractinian Coral Montastrea curta." Frontiers in microbiology 7: 230.
12. Ni, G., et al. (2016). "Arctic Micromonas uses protein pools and non-photochemical quenching to cope with temperature restrictions on Photosystem II protein turnover." Photosynthesis Research: 1-18.
13. Rickelt, L. F., et al. (2016). "Fiber-Optic Probes for Small-Scale Measurements of Scalar Irradiance." Photochemistry and Photobiology 92(2): 331-342.
14. Schwerna, P., et al. (2016). "Quantification of oxygen production and respiration rates in mixotrophic cultivation of microalgae in non-stirred photobioreactors." Engineering in Life Sciences: n/a-n/a.
15. Trampe, E. C. L., et al. (2016). "In situ Dynamics of O(2), pH, Light, and Photosynthesis in Ikaite Tufa Columns (Ikka Fjord, Greenland)—A Unique Microbial Habitat." Frontiers in microbiology 7: 722.
16. Wolf, J., et al. (2016). "Multifactorial comparison of photobioreactor geometries in parallel microalgae cultivations." Algal Research 15: 187-201.
17. Xie, X., et al. (2016). "Photorespiration participates in the assimilation of acetate in Chlorella sorokiniana under high light." New Phytologist 209(3): 987-998.
